Хирургическая техника при интрапаренхиматозной локализации мелких эхинококковых кист

Медицина и образование / Профилактика резидуального эхинококкоза органов брюшной полости и забрюшного пространства / Содержание работы / Хирургическая техника при интрапаренхиматозной локализации мелких эхинококковых кист

Страница 2

Статистический анализ полученных результатов показал, что исход операции зависел от толщины перикистозной паренхимы (Kruskal–Wallis H(1, N=27) = 18,3 p = 0,00; Overall Median = 2,7; c2 = 16,4, df = 1, p = 0,0001). Для оценки существенности этой зависимости проведен непараметрический корреляционный анализ: связь между значением толщины перикистозной паренхимы и результатом операции оказалась сильной и статистически достоверной (Spearman R=0,84 t(N–2)=7,7 p=0,00). В то же время достоверного влияния размера кисты на исход операции не отмечено (Kruskal–Wallis H (1, N= 27) = 1,0 p = 0,3; Overall Median = 4,3 c2 = 1,08, df = 1, p = 0,3).

Для проверки возможности получения математической модели исхода экспериментальной эхинококкэктомии в традиционном исполнении результаты экспериментов подвергнуты дискриминантному анализу. Полученная модель оказалась статистически достоверной (Wilks' Lambda: 0,28 approx. F (2,24)=30,43 p<0,00).

При мелких, труднодоступных для привычной оперативной техники кистах наиболее доступным для клинического применения остается способ чрескожной пункции (дренирования) кисты под контролем УЗИ. При сочетании больших и малых кист печени и брюшной полости для удаления мелких интрапаренхиматозных кист нами предлагается метод чрескапсульной пункции (дренирования) кист под контролем ИОУЗИ. Ключевым моментом при пункционном методе эхинококкэктомии является безупречность антипаразитарной обработки. В подобном исполнении эхинококкэктомии визуальный контроль надежности антипаразитарной обработки фиброзной полости проблематичен. Проблема заключается в том, что при инфузии–реаспирации может возникнуть закупорка пункционной иглы или дренажа фрагментом хитина и дальнейшая антипаразитарная обработка становится малоэффективной. Кроме того, при пункционном лечении на этапе инфузии сколецида хитин может соскользнуть с иглы, после чего контакт вводимого антипаразитарного препарата с зародышевыми элементами (локализованными при этом в просвете хитиновой оболочки) прекращается. Удаление иглы (троакара) и ее повторная установка часто заканчивается неудачей, поэтому к такой тактике хирурги не прибегают.

Для решения этой проблемы нами разработан более надежный способ апаразитарной эвакуации содержимого эхинококковой кисты, применимый как при интрапаренхиматозной, так и поверхностной локализации кист. Суть предлагаемого способа заключается в недопущении спадения стенок хитиновой оболочки при инфузии–реаспирации с постепенной заменой (вымыванием) содержимого на антипаразитарный раствор (25–30 % раствор NaCl). Это может быть достигнуто путем одновременного проведения аспирации и реинфузии, при котором объем жидкости в просвете хитиновой оболочки значительно не уменьшается. При этом турбулентные движения струи воды дополнительно способствуют подъему со дна гидатидного «песка» и его эвакуации. Поскольку объем жидкости в просвете хитиновой оболочки значительно не уменьшается, хитиновая оболочка остается расправленной и не может соскользнуть с иглы. В конце процедуры, если не предполагается установление дренажа, в просвет кисты вводится 70–96% этиловый спирт в качестве склерозанта.

Для проведения такой процедуры киста пунктируется двухпросветной иглой (рис. 2). Устройство (длиной 7–15 см) состоит из наружной иглы (троакара) с внутренним диаметром 2 мм, внутри которой вмонтирована другая игла с внешним диаметром 1 мм. Каждая игла имеет свою канюлю, через которую осуществляется постонная инфузия либо аспирация (через узкий просвет – инфузия, через широкий – аспирация).