Хирургическая техника при интрапаренхиматозной локализации мелких эхинококковых кист

Медицина и образование / Профилактика резидуального эхинококкоза органов брюшной полости и забрюшного пространства / Содержание работы / Хирургическая техника при интрапаренхиматозной локализации мелких эхинококковых кист

Страница 3

Рис. 2.

Устройство для непрерывного замещения содержимого эхинококковой кисты на антипаразитарный раствор

Эффективность способа проверена на эхинококковых кистах печени крупного и мелкого рогатого скота (29 органов). Всего проведена обработка 38 кист печени размерами от 1 до 13 см. В качестве антипаразитарного раствора использовали 20% гипертонический раствор NaCl. Для регистрации возможного попадания жидкости за пределы хитиновой оболочки проводили интенсивное окрашивание антипаразитарного раствора метиленовой синькой или бриллиантовой зеленой (р/п №96881 ДГМА). Неудачным считался результат, если фиброзная полость окрашивалась в синий цвет либо не удалось провести всю намеченную процедуру замещения содержимого кисты и введение спирта по причине закупорки игл.

В 27 случаях гидатидная жидкость была полностью замещена на гипертонический раствор без задержки, в конце процедуры в кисту введен спирт, а при контрольном вскрытии кисты фиброзная капсула не имела следов окраски. В 5 случаях, хотя процедура обработки кисты прошла без осложнений, отмечено подкрашивание фиброзной полости, что говорило о подтекании содержимого кисты в пространство между хитиновой и фиброзной оболочками на этапе вымывания гидатидной жидкости с зародышевыми элементами.

В 6 случаях полностью осуществить процедуру не удалось (изменение местоположения иглы, закупорка просвета иглы, неудачная инфузия спирта). Таким образом, попытки проведения 11 экспериментальных операций пункционным способом нами признаны как неудачные.

Проведенная статистическая обработка результатов эксперимента показала, что распределение удачных и неудачных результатов операции не зависело от размера кисты и толщины перикистозной паренхимы. Коэффициенты корреляции между исходом операции и анализируемыми параметрами (диаметр кисты и толщина паренхимы) оказались несущественными и статистически недостоверными (Spearman R=0,16 p=0,33 и R=0,12 p= 0,48 соответственно), что подтверждает случайность (отсутствие закономерности) получения неудачных результатов. При проведении дискриминантного анализа полученная модель также оказалась статистически недостоверной (переменных в модели – 2; Wilks' Lambda: 0,94 approx. F (2,35)=1,03 p< 0,37).

Для оценки надежности антипаразитарной обработки после завершения экспериментальной операции проведена микроскопия содержимого эхинококковой кисты с применением разработанной на нашей кафедре совместно с кафедрой детской хирургии методики, позволяющей длительно осматривать поля зрения («Способ поддержания температурного режима при микроскопии нативного препарата зародышевых элементов эхинококковой кисты» р/п № 03–1235 и «Способ микроскопии нативных препаратов зародышевых элементов эхинококковой кисты» р/п № 03–1236). Оценку сколецидной эффективности проводили по методике Ф.П.Коваленко (1998), а также по известным визуальным критериям жизнеспособности протосколексов эхинококка: сохранение подвижности и структуры, наличие известковых телец, способность принимать окраску в нативном препарате.

Во всех случах, за исключением 6 кист с незавершенной обработкой, осмотр остатков жидкости внутри хитиновой оболочки показал, что крупный гидатидный песок отсутствовал, а при микроскопии обнаруживались единичные протосколексы и мелкие выводковые капсулы с выраженной контрактурой, деформацией и признаками разрушения. Тестирование обнаруженных протосколексов показало их нежизнеспособность.